1. 感染預(yù)實驗
以 24 孔培養(yǎng)板為例，同時進行目的細胞和工具細胞的感染預(yù)實驗。工具細胞可選擇 293T（人胚腎上皮細胞）、H1299（人肺癌細胞）或其它細胞。實驗材料：培養(yǎng)基、24 孔培養(yǎng)板，移液槍，槍頭， EP 管，細胞計數(shù)板、冰盒、廢液缸等。（根據(jù)目的細胞情況，可酌情使用 Polybrene）
Day1：
準(zhǔn)備細胞：培養(yǎng)細胞至對數(shù)生長期，細胞以胰yi酶消化計數(shù)后，用細胞計數(shù)測出細胞密度，每孔接種 5×104 個細胞，添加細胞培養(yǎng)液至 500µL。通常情況下，該接種量的 H1299 或 293T 細胞在感染后第 3 天可生長至 80%-90% 融合度。（接種目的細胞時，請根據(jù)細胞的實際生長速度調(diào)整接種量，使目的細胞感染后第 3 天生長至 80%-90% 融合度）
Day2：
?。?）準(zhǔn)備慢病毒顆粒：計算所需慢病毒顆粒的量，將凍存在 -80℃ 的慢病毒顆粒取出，冰浴融化；
?。?）感染目的細胞：從培養(yǎng)箱中拿出細胞，置于顯微鏡下觀察細胞生長狀態(tài)及細胞融合度；如細胞狀態(tài)較好，則開始實驗：
A. 用移液槍小心吸去 24 孔板中的舊培養(yǎng)液，加入新的完wan全培養(yǎng)液；
B. 在細胞中分別加入計算好的慢病毒顆粒液，將培養(yǎng)板平置于工作臺上，以劃 8 字的方式輕柔混勻；
C. 混勻后，細胞培養(yǎng)板置于 37℃、5% CO2 培養(yǎng)箱，過夜培養(yǎng)。
Day3：
更換培養(yǎng)液：感染 12-16 小時后，吸出含慢病毒顆粒的培養(yǎng)液，重新向培養(yǎng)板添加含 5% 滅活 FBS（胎牛血清）的培養(yǎng)液，繼續(xù)培養(yǎng)。（目的細胞需要調(diào)整感染時長，部分細胞不可感染超過 12 小時。）
Day4：
繼續(xù)培養(yǎng)細胞，觀察細胞狀態(tài)是否有異常。
Day5：
觀察（評估）慢病毒顆粒感染效率：蓋緊 24 孔培養(yǎng)板，使用 70% 乙醇清理培養(yǎng)板外壁，在倒置熒光顯微鏡觀察熒光，拍照并估計慢病毒顆粒對細胞的感染效率。（如果慢病毒顆粒攜帶的基因表達所需的時間較長，熒光表達所需時間也較長，建議感染 72、96 小時后觀測熒光表達。）
根據(jù)熒光情況，可以初步從 MOI 梯度摸索實驗中，找出目的細胞的 MOI 值。
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