平均有約15~35%細胞實驗室發生支原體污染（65~80%嚴重污染），超過一半實驗室有兩種支原體污染；而各地的細胞庫中，也有發現5~35%不等的支原體感染率，日本甚至高達60%。

    但！目前有在做常規支原體監控的細胞實驗室卻不到50%！

    支原體為細菌的一類，zui早在1898年由法國 E. Nocard 及 E.R.Roux 從肺疫牛隻中分離出來，1956年才正式命名為支原體 (Mycoplasma)；支原體大小介于細菌與病毒之間 (直徑介于0.15-0.3?m)，為目前發現zui小zui簡單的原核微生物，唯1可見的胞器是核糖體，沒有細胞壁，只有三層結構的細胞膜，所以呈高度多形性，有球形、桿形、絲狀，分枝狀等多種態 。

    大多支原體基因組只有0.58－1.38百萬堿基，這使得它的生物合成能力薄弱，必須利用本身細胞膜表面高密度的黏附素附著于宿主細胞表面，并交換宿主的細胞質及細胞膜成分，來獲取增殖需要的物質。但由于支原體生長條件復雜，使得菌體培養困難重重，導致過去支原體一直不受關注；近幾年，拜分子生物學與基因組學的進步所賜，基因構造簡單的支原體已引起了較為廣大注意。

    至今，共有超過180種支原體被發現，有超過20種能感染體外培養的細胞，而目前實驗室zui常見(95% 以上)的支原體則來自其中6種：

    源自于實驗人員鼻腔、口腔，并經由飛沫傳至培養細胞中的口腔支原體（M.orale）、豬鼻支原體（M.fermentans）及人型支原體（M.hominis），居于*（占總體的50%以上）。

    其次則為大多來自牛血清的精氨酸支原體（M. Arginini）、萊氏無膽甾支原體（A. Laidlawii）、及來自豬源胰酶的豬鼻支原體（M. Hyorhinis）。

    PS：BI胰酶經過輻照，不含活的支原體。

    既然支原體是細菌的一種，抗生素一加不就好了嗎?

    為什么可以搞到這么多細胞庫污染?

    支原體體積非常小, 極易通過0.22um濾膜, 且一般光學顯微鏡無法觀察到。

    支原體能附著并存活在器物表面(操作臺, 培養箱,顯微鏡等), 提高操作污染概率。

    支原體生長緩慢，通常不破壞宿主細胞但默默改變了細胞生長代謝，且對傳統抗生素具抗性，因為抗生素大多破壞細菌細胞壁, 而支原體恰恰沒有細胞壁。

    支原體污染初期, 培養基不變色, 細胞形態正常，但等大量污染時, 為時已晚, 耗時又耗力。

    你說，支原體煩不煩！

    目前檢測方法可大致分成四種：

    ■微生物培養法

    將樣品培養在特殊瓊脂培養基上，在37?C有氧環境中孵育2周，陽性培養基上會長出100~400um大小的“煎蛋狀”菌落。

    ■DNA螢光染色法

    支原體DNA中A-T含量占多數（55～80%），容易被Hoechst 33258此熒光劑染上，被支原體污染之細胞經染色后，在細胞核外與細胞周圍可看到許多大小均一之螢光小點。

    ■ELISA法

    將支原體16S核糖體RNA標上標簽，然后用特定抗體預包被過的微孔板對標簽進行捕獲，再加入顯色用的抗體及底物，zui后通過比色法得出檢測結果。

    ■PCR法

    原理為擴增支原體16S核糖體RNA的基因，能檢測多達19種支原體，操作快速、準確性高，市面上有多款相關產品可參考

    消滅支原體依不同處理發法，分成四大類：

    ■物理法：高溫高壓滅菌

    ■免疫法：使用支原體特異性抗血清、裸鼠傳代法

    ■化學法：界面活性劑處理（BI：Pharmacidal 支原體噴壺）

    ■生化法：使用抗生素等藥物（BI：BIOMYC 支原體處理試劑）

    目前，大環內酯（Macrolides）、四環素（Tetracyclines）和喹諾酮（Quinolones）這三類抗生素，是*對抗支原體效果*的藥物，而市面上有許多針對不同菌株配置的抗生素產品可以參考。