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免疫組化方法中關鍵環節及其原理解述
點擊次數:681 更新時間:2021-07-28

一、酶免疫組化的關鍵環節

  1、標本固定:固定的目的是①防止標本從玻片上脫落;②除去防礙抗原-抗體結合的類脂,使抗原抗體結合物易于獲得良好的染色結果;③固定的標本易于保存。

  2、脫水、石蠟包埋和制片:脫水用梯度乙醇(由低到高)充分脫水、對組織要*浸蠟、切片時刀片要干凈和鋒利。否則,容易裂片和脫片等。

  3、脫蠟和水化:這是為了后面的抗體等試劑能夠充分與組織中抗原等結合反應。脫蠟可以先60度20min,然后立即二甲苯1-3分別10min,但當天制好的切片可以60度3-4h.水化用梯度乙醇(由高到低)。若脫蠟和水化不全易出現局灶性反應和浸洗不全,而產生非特異性背景著色。

  4、抗原修復:由于組織中部分抗原在甲醛或多聚甲醛固定過程中,發生了蛋白之間交聯及醛基的封閉作用,從而失去抗原性;通過抗原修復,使得細胞內抗原決定族重新暴露,提高抗原檢測率。常用的修復方法從強到弱一般分為三種,高壓修復、微波修復、胰酶修復。修復液也分為若干種(具體的可以查閱相關資料,大量的:中性的、高pH的等)。我們實驗室一般用微波修復中火6min*4次,效果不錯。注意微波修復后自然冷卻30min左右(只要你覺得修復液的溫度達室溫即可)。

  5、細胞通透:目的是使抗體能夠充分地進入胞內進行結合反應。一般用TritonX-100、蛋白酶k等通透液。如TritonX-100可以溶解細胞膜、細胞核膜、細胞器膜上的脂質而使抗體及大分子結構的物質進入胞漿和胞核內,故在細胞免疫組化時尤為推薦使用,這樣抗體就能順利進入胞內與相應抗原結合。在免疫組織化學(>10um厚切片)和免疫細胞化學中一般用TritonX-100作為細胞通透劑,在膜上打孔。

  6、滅活內源性過氧化物酶和生物素:在傳統的ABC法和SP法中,免疫組化反應結果容易收到內源性過氧化物酶和生物素的干擾,必須用過氧化氫和卵白素等進行滅活。滅活內源性POD一般3%過氧化氫滅活時間短點,可以10min左右,而0.3%過氧化氫則可以適當延長封閉時間,一般10~30min;用甲醇配置過氧化氫比雙蒸水或PBS可能好在保護抗原和固定組織作用,過氧化氫孵育時間過長易引起脫片;現用現配,配好后4度避光保存。不過,現在已有“第二代即用型免疫組化試劑盒"避免內源性生物素的干擾,推薦使用。

  7、血清封閉:組織切片上有剩余的位點可以與一抗非特異性結合,造成后續結果的假陽性;封閉血清一般是和二抗同一來源的,血清中動物自身的抗體,預先能和組織中有交叉反應的位點發生結合;也可以用小牛血清、BSA、羊血清等,但不能與一抗來源一致。一般室溫或37度10-30min.

  8、一抗和二抗濃度和孵育時間:一抗孵育條件在免疫組化反應中最重要,包括孵育時間和抗體濃度。一抗孵育溫度有幾種:4度、室溫、37度,其中4度效果蕞佳;孵育時間:這與溫度、抗體濃度有關,一般37度1-2h,而4度過夜和從冰箱拿出后37度復溫45min.具體條件還要摸索。二抗孵育條件:二抗一般室溫或37度30min-1h,具體時間需要摸索,而濃度一般有工作液,若是濃縮液還要摸索濃度。但在免疫組化中我們一般先把二抗濃度和孵育時間先定下,然后去摸索一抗濃度和孵育時間。

  9、抗體稀釋液:其實許多實驗室抗體稀釋液就用一般PBS即可,但專用的抗體稀釋液中除PBS成份外,還加了疊dan化鈉防腐劑、BSA穩定劑等組份,對抗體的多次回收利用較好。正因為這種原因,我一直用國產的專用抗體稀釋液,一段時間在更換新抗體稀釋液時實驗結果出現了陰性結果(提示可能一抗沒有結合),最后從抗體濃度和孵育時間、封閉時間等原因排除后,發現是新抗體稀釋液的PH值偏酸,而使抗原抗體反應不佳,終而出現假陰性結果。

  10、切片清洗(浸洗、沖洗和漂洗):為了防止一抗、二抗等試劑殘留而引起非特異性染色,所以適當地加強清洗(延長時間和增多次數)尤為重要,我一般在一抗孵育前的清洗是3min*3次,而一抗孵育后的清洗均為5次*5min.

  注意:(1)單獨沖洗,防止交叉反應造成污染。(2)溫柔沖洗,防止切片的脫落。我喜歡用浸洗方式;(3)沖洗的時間要足夠,才能*洗去結合的物質。(4)PBS的PH和離子強度的使用和要求。這方面我有慘痛教訓,當時我買的抗體稀釋液偏酸,結果背景一片黃(未見特異性染色),建議PH在7.4-7.6濃度是0.01M.(中性及弱鹼性條件(PH7-8)有利于免疫復合物的形成,而酸性條件則有利于分解;低離子強度有利于免疫復合物的形成,而高離子強度則有利于分解)。

  11、DAB顯色:背景的深淺和特異性染色的深淺均可以由DAB孵育條件決定。DAB顯色時間不是固定的,主要由顯微鏡下控制顯色時間,到出現特異性染色較強而本底著色較淺時即可沖洗;DAB顯色時間很短(如幾秒或幾十秒)就出現很深的棕褐色,這很可能說明你的抗體濃度過高或抗體孵育時間過長,需要下調抗體濃度或縮短你的抗體孵育時間;此外,若很短時間就出現背景很深,還有可能你前面的封閉非特異性蛋白不全,需要延長封閉時間;DAB顯色時間很長(如超過十幾分鐘)才出現陽性染色,一方面可能說明你的抗體濃度過低或孵育時間過短(最好一抗4度過夜);另一方面就是封閉時間過長。

  12、復染:目的是形成細胞輪廓,從而更好地對目標蛋白進行定位,經常用蘇木素復染(胞核染料)。注意蘇木素復染時間要看當時的室溫、溶液的新舊、目標抗原的定位等情況,一般數秒-數分鐘,胞漿蛋白可以適當時間長一點,而胞核蛋白則要短。不過這個如果染色不理想可以補救的。即:染色深則分化時間稍長些即可;染色淺則再置于蘇木素中染色即可。

  鹽酸酒精是分化,氨-水是返蘭。作用不同。片子復染完后流水振洗,然后置于鹽酸酒精中數秒(一定動作要快)后拿出流水振洗,在放入氨-水中返蘭即可。

  13、封片:為了長期保存,我們一般用中性樹膠等封片,避免產生氣泡,方法是直接在載玻片組織上滴一滴封片液,然后一手拿住蓋片某一拐角,而另一手拿對面的那個拐角,接近封片液近端的拐角先降低,直至接觸到液體時為止;當發現液體接觸面在不斷彌散時,則可以緩慢降低另一拐角,這樣一般不會產生氣泡。

  二、免疫熒光方法中的重要環節

  1、冰凍切片制備:建議用新鮮組織,否則組織細胞內部結構破壞,易使抗原彌散。選用干凈鋒利的刀片、組織一定要冷凍適度等,防止裂片和脫片嚴重。

  2、組織切片固定:切好片風干后立即用冰丙酮等固定液進行固定5-10min,尤其要較長時間保存的白片,一定要及時固定和適當保存。

  3、血清封閉:為防止內源性非特異性蛋白抗原的結合,需要在一抗孵育前先用血清(與二抗來源一致)封閉,減弱背景著色。血清封閉的時間是可以調整的,一般10-30min.

  4、一抗孵育條件:在免疫組化反應中最重要,包括孵育時間和抗體濃度。一抗孵育溫度有幾種:4度、室溫、37度,其中4度效果蕞佳;孵育時間:這與溫度、抗體濃度有關,一般37度1-2h,而4度過夜和從冰箱拿出后37度復溫45min.具體條件還要摸索。

  5、二抗孵育條件:二抗一般室溫或37度30min-1h,具體時間需要摸索,而濃度一般有工作液,若是濃縮液還要摸索濃度,切記要避光反應。但在免疫熒光中我們一般先把二抗濃度和孵育時間先定下,然后去摸索一抗濃度和孵育時間。最后,熒光素標記的二抗隨著保存時間的延長,可能后有大量的游離熒光素殘留,需要注意配制時小包裝和并進行適當的離心。

  6、復染:目的是形成細胞輪廓,從而更好地對目標蛋白進行定位。一般常用DAPI復染。

  7、封片:為了長期保存,我們一般用緩沖甘油等封片,此外還有專門的抗熒光萃滅封片液。避免產生氣泡,方法是直接在載玻片組織上滴一滴封片液,然后一手拿住蓋片某一拐角,而另一手拿對面的那個拐角,接近封片液近端的拐角先降低,直至接觸到液體時為止;當發現液體接觸面在不斷彌散時,則可以緩慢降低另一拐角,這樣一般不會產生氣泡。

  8、切片清洗:為了防止一抗、二抗等試劑殘留而引起非特異性染色,所以適當地加強清洗(延長時間和增多次數)尤為重要,我一般在一抗孵育前的清洗是3min*3次,而一抗孵育后的清洗均為5次*5min.注意(1)單獨沖洗,防止交叉反應造成污染。(2)溫柔沖洗,防止切片的脫落。我喜歡用浸洗方式;(3)沖洗的時間要足夠,才能*洗去結合的物質。(4)PBS的PH和離子強度的使用和要求。這方面我有慘痛教訓,當時我買的抗體稀釋液偏酸,結果背景一片黃(未見特異性染色),建議PH在7.4-7.6濃度是0.01M.(中性及弱鹼性條件(PH7-8)有利于免疫復合物的形成,而酸性條件則有利于分解;低離子強度有利于免疫復合物的形成,而高離子強度則有利于分解)。

  9、拍照:有條件的話最好立即拍照,若不能及時拍照,也要封好片和用指甲油封固,保持避光和濕度。使用熒光顯微鏡注意嚴格按照熒光顯微鏡出廠說明書要求進行操作,不要隨意改變程序;應在暗室中進行檢查;防止紫外線對眼睛的損害,在調整光源時應戴上防護眼鏡;檢查時間每次以1~2h為宜,超過90min,超高壓汞燈發光強度逐漸下降,熒光減弱;標本受紫外線照射3~5min后,熒光也明顯減弱或褪色;激發光長時間的照射,會發生熒光的衰減和淬滅現象;所以最多不得超過2~3h;熒光顯微鏡光源壽命有限,標本應集中檢查,以節省時間,保護光源。天熱時,應加電扇散熱降溫,新換燈泡應從開始就記錄使用時間。燈熄滅后欲再啟用時,須待燈光充分冷卻后才能點燃。一天中應避免數次點燃光源。關閉汞燈至少在開啟15-30分鐘后;標本染色后立即觀察,因時間久了熒光會逐漸減弱。若將標本放在聚乙-烯塑料袋中4℃保存,可延緩熒光減弱時間,防止封裱劑蒸發;使用的玻片等載體,都必須厚度均勻,無明顯的自發熒光,如果使用油鏡,還必須保證鏡油為無熒光鏡油;電源最好裝穩壓器,否則電壓不穩不僅會降低汞燈的壽命,也會影響鏡檢的效果。

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